cancer實驗動物模型，英瀚斯生物小編為您整理：一般使用化學致cancer物質誘發動物發生cancer。誘發小鼠肝臟cancer的化合物就有58種，誘發途徑口服、注射、埋藏、涂抹等，方法簡單、操作容易、成功率高。常用方法有：1）皮膚涂抹法：將致cancer物質配制成溶液，反復涂抹皮膚，而復制出cancer，如用乙酰胺基的B酮液涂抹皮膚復制皮膚cancer。2）注射法：將致cancer劑制成針劑，經靜脈、腹腔、皮下等部位給動物注射，如用氨基偶氮甲苯、揉酸等復制cancer。3）埋藏法：采用外科手術方法，將致cancer物質包埋于皮下或其他組織內，也有將經致cancer物質作用的qi官組織移植于自體或同種系動物皮下，誘發出有該qi官組織特點的cancer，由于將cancer組織移植到皮下，便于觀察，若接種時加用一些降低免疫能力的措施，如適量放射線，效果更好。實驗動物模型的造模方法？內蒙古制作實驗動物模型

實驗動物模型的分類。人類疾病動物模型種類很多，可按不同情況進行分類，按產生原因分類，按系統范圍分類，按模型對象分類，按中醫體系分類。這里只列舉按產生原因分類的情況。按產生的原因可分為自發性動物模型和誘發性動物模型。

自發性動物模型：突變性動物模型(mutantanimalmodels)：指未經任何人工處理，利用動物在自然條件下發生疾病來用作模型。抗病性動物模型(negativeanimalmodels)：是指特定的疾病不會在某種動物身上發生，從而探討為何這種動物對該病有天然的抵抗力。異構性動物模型(differentconstructanimalmodels)：是指利用健康動物生物學特征來提供疾病模型。培育性動物模型(breedinganimalmodels)：是指通過遺傳育種手段將基因突變異常表現保留下來用作疾病模型。 貴州構建實驗動物模型外包小鼠實驗動物模型都有哪些？

腎小管壞死小鼠模型

【操作步驟】BALB/c小鼠，放置在每升空氣中含有5mg的氯仿的環境中，持續3h后，可引起不同程度的腎壞死。

【結果分析】出生46～106d的雄性小鼠發生率可高達90％以上。持續在氯仿氣霧中24h，動物腎臟組織學觀察，腎***損害且腎小管明顯壞死。

急性腎小管壞死大鼠模型

【操作步驟】SD或Wistar大鼠，體重190～250g，實驗前置于代謝籠中飼養，記錄食物、飲水和尿量。實驗時由尾靜脈注射**1.0mg/kg。24h后出現急性腎小管壞死表型。

【結果分析】尾靜脈注射**24h后，尿量明顯減少，尿滲透濃度降低，且出現細胞學的改變，近曲小管的末端部分可見腎壞死灶。

4-硝基兒茶酚等制劑引起的腎壞死模型

【操作步驟】成年雄性SD或Wistar大鼠，實驗前置于代謝籠中飼養，測12h的尿量和尿中的酸性磷酸酶、堿性磷酸酶、乳酸脫氫酶、谷氨酰脫氫酶的正常排泄水平。可選用下列不同藥品給大鼠進行腹腔注射，造模。(1)硝酸鈉：2.5mg/(ml·100g)；(2)4-硝基兒茶酚：1mg/(ml·100g)；(3)4-硝基茶胂酸；2.5mg/(ml·100g)；(4)4-氨基兒茶酚：1.5mg/(ml·100g)。用藥后12h測定尿量和尿酶量。

【結果分析】腎中毒的大鼠尿量普遍減少。腎組織表現***損害和腎小管明顯壞死。

轉基因實驗動物模型，英瀚斯生物表示：由于轉基因動物發病原因確定，病理癥狀已知，有利于AD機制研究和防治藥物的篩選，是AD研究中使用范圍很廣的的動物模型。一般以與AD發病有關的APP、早老素（PS）和tau等基因突變為主的單轉基因、雙轉基因和多轉基因動物模型為主要研究對象。AD轉基因小鼠的構建。Tg小鼠是通過獲取單細胞胚胎并將修飾或構建的相關基因插入胚胎的雄性細胞核而產生的。然后將胚胎植入一只假孕小鼠體內，由此產生的后代攜帶感興趣的突變蛋白，從而建立了一個正在研究的疾病模型。轉基因小鼠可以培育出一種作為人類疾病模型的小鼠。大鼠實驗動物模型都有哪些？

誘導式關節炎模型根據造模物質的不同進行分類，常見的有佐劑誘導型、膠原誘導型和膠原抗體誘導型關節炎。其中大鼠CIA模型的組織和免疫學改變與人RA**接近，AA模型的病情表現**為明顯和持續。

（一）佐劑誘導型（AA）AA，又稱為弗氏佐劑關節炎，介導溶劑分為完全佐劑（CFA）和不完全佐劑（IFA）。通常用CFA作介導劑，AA模型在T細胞相關致炎通路的藥物篩選上發揮著重要的作用。

（二）膠原誘導型（CIA）CIA模型是由Trentham等于1977年***建立的實驗性關節炎動物模型。通過皮下注射Ⅱ型膠原和等量CFA的混合液來建造，來源于雞、小牛和大鼠的Ⅱ型膠原均能引起關節炎癥。CIA是MHC相關型，以T/B淋巴細胞介導的關節炎癥侵蝕為主要特征。

（三）膠原抗體誘導型(CAIA)抗Ⅱ型膠原單克隆抗體源自8周大的雄性DBA/1J小鼠CIA模型，這些抗體混合物注射到模型小鼠的關節腔后可直接作用于Ⅱ型膠原或其他在體內高表達的自身抗原，從而發揮免疫介導作用。該模型的臨床癥狀與CIA和RA很相似，突出特點是能在幾天之內迅速發病，關節組織中巨噬細胞和多核型白細胞浸潤。該模型很好的體現了外源性抗原抗體刺激體誘導的嚴重關節損傷。 常規實驗動物模型制作。內蒙古制作實驗動物模型

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蛛網膜下腔出血系由腦底或腦表部位的血管破裂，血液破入蛛網膜下腔引起。顱內動脈瘤，腦動、靜脈畸形，血壓高動脈硬化等為常見病因。蛛網膜下腔出血后可引起腦血管痙攣。因此，蛛網膜下腔出血和遲發性腦血管痙攣的模型有許多共同之處，造模時可同時作為參考。

英瀚斯熟練掌握蛛網膜下腔出血造模，及其他動物模型。

復制方法 ：健康大鼠，雌雄不拘，體重為250～350g。將釣魚線剪成長約50mm，并在18mm處作標記，酒精消毒后置于無菌生理鹽水中備用。麻醉后仰臥固定，剃除頸部毛發，手術區域皮膚消毒。頸正中切口，分離右側頸總動脈、頸外動脈、頸內動脈，結扎、切斷頸外動脈分支及頸總動脈分叉處小動脈，并游離頸外動脈主干，沿著頸內動脈暴露翼腭動脈，在頸外動脈殘端放一絲線，使其呈一松結。在翼腭動脈起始部置一微動脈夾，同時夾閉頸總動脈及頸內動脈主干近端。在頸外動脈殘端剪一小口，將制備好的栓線插入。此時將頸外動脈殘端處絲線的松結拉緊，除去頸內動脈的動脈夾，繼續將絲線沿著頸內動脈插入，直至感到有阻力，這時稍用力再插入1.0～1.5mm后有落空感即可抽出絲線并除去微動脈夾。栓線的直徑及插入的深度根據動物的體重而定。 內蒙古制作實驗動物模型