外泌體（Exosome）是細胞主動分泌的囊泡樣小體，大小均一，直徑30-200nm，密度1.10-1.18g/ml，來源普遍，幾乎所有細胞都可分泌，在血液，尿液，唾液，腦脊液，腹水，乳汁等體液中普遍分布。外泌體較早在1986年發現于培養的綿羊紅細胞上清液中。1996年，研究者發現外泌體作為抗原呈遞因子參與T細胞依賴的抗一些病癥反應，開啟了外泌體蛋白研究的新天地。2013年諾貝爾生物/醫學獎解答了細胞如何組織其內部較重要的運輸系統之一——囊泡傳輸系統的奧秘。超離法因操作簡單，獲得的囊泡數量較多而廣受?歡迎，但過程比較費時，且回收率不穩定，純度也受到質疑。超濾離心法簡單高效，且不影響外泌體的生物活性，是提取細胞外泌體的一種新方法。合肥外泌體提取試劑推薦廠家

外泌體在肺病進程中的作用：肺病細胞來源外泌體（LCC-exosome）可以通過刺激一些病癥血管的形成來促進一些病癥的生長。據相關報道稱，LCC-exosome中的miR-210可以通過調節基質細胞中酪氨酸受體激酶A3的含量，促進一些病癥血管的生成；而LCC-exosome中的miR-23a則可以通過啟動脯氨酰羥化酶及壓制緊密結合蛋白ZO-1來促進肺病的生血管作用。此外，有研究發現，外泌體中的內容物可以觸發上皮-間質轉化（EMT）。晚期肺病患者血清中外泌體波形蛋白表達增加，促使人正常支氣管上皮細胞出現EMT，從而使肺支氣管正常上皮細胞出現增殖，遷移能力。色譜法。這種方法分離到的外泌體在電鏡下大小均一，但是需要特殊的設備，應用不普遍廈門外泌體提取試劑廠家供應外泌體的提取分離：超濾離心。

外泌體的提取方法學規范、統一定量及鑒定等。關于外泌體的提取有超速離心、試劑盒、超濾法、蔗糖密度梯度離心等，然而各種方法均有其利弊。超速離心法是目前外泌體相關文章中的主流方法，由于離心步驟繁瑣，費事費力，而且步驟多導致實驗中容易污染，且損耗量大，使得較終回收的外泌體不穩定。而且對于抽提細胞上清來說，更是極為不請便，試想用提取300ml的上清需要6個50ml離心管，無論是過濾還是后續的每一步的離心去沉淀，都具有操作極其不便的缺點，總之非常麻煩。而超濾法存在外泌體會堵塞膜孔，造成濃縮效率低，濃縮管重復利用差，甚至堵塞在膜孔的外泌體還可能會粘連成團，造成損失及較后的數據有誤差，對于后續實驗也有影響

密度梯度離心法該方法由于比較繁瑣，用的較少。原理是：像所有的脂質小囊泡一樣，外泌體可以懸浮于特定密度梯度的蔗糖中，其密度范圍1.13g/ml-1.21g/ml，將要分離外泌體的樣本液體置于梯度蔗糖介質上，隨后通過離心將外泌體分離。此法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣，耗時，對離心時間極為敏感。具體步驟是：收集培養2d的上清液。將培養上清液先以1500r/min離心5min除去細胞及碎片,再依次以1000×g離心10min取上清,10000×g離心30min取上清,然后用100ku超濾離心管(Millipore)濃縮至15mL,在體內細胞間物質和信號轉導中起到重要作用。

外泌體的提取主要包括以下幾種方式。一是超速離心法，這是目前外泌體提取較常用的方法。此種方法得到的外泌體量多，但是純度不足，電鏡鑒定時發現外泌體聚集成塊，由于微泡和外泌體沒有非常統一的鑒定標準，也有一些研究認為此種方法得到的是微泡不是外泌體。二是過濾離心，這種操作簡單、省時，不影響外泌體的生物活性，但同樣存在純度不足的問題。三是密度梯度離心法，用此種方法分離到的外泌體純度高，但是前期準備工作繁雜，耗時，量少。、由于這些核酸被囊膜包裹而被保護，穩定性高，不易降解。重慶正規外泌體提取試劑

外泌體的提取分離：超速離心法（差速離心）。合肥外泌體提取試劑推薦廠家

由于這些核酸被囊膜包裹而被保護，穩定性高，不易降解，是一種用于一些病癥診斷和預后監測的非常理想的新型生物標記物一些疾病的早期診斷、用藥監控、預后判斷。近年來，隨著人們對外泌體的研究和認識加深，外泌體檢測作為一種新型的液體活檢熱點技術已被許多臨床科研機構普遍地應用于一些病癥和疾病的無創診斷、治病和監測；如何高效地提取外泌體是實現這項新興液體活檢技術臨床常規化應用的關鍵。外泌體(Exosome)是從體液(尿液、血液、唾液、腹水、胸腹水等)和細胞液中快速提取的，其是活細胞分泌到胞外的囊泡樣小體，含有多種蛋白和核酸分子(DNA、RNA、以及miRNA)，在體內細胞間物質和信號轉導中起到重要作用。合肥外泌體提取試劑推薦廠家