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外泌體的提取方法：1.超速離心法（差速離心）。超離法是較常用的外泌體純化手段，采用低速離心、高速離心交替進行，可分離到大小相近的囊泡顆粒。超離法因操作簡單，獲得的囊泡數量較多而廣受歡迎，但過程比較費時，且回收率不穩定（可能與轉子類型有關），純度也受到質疑；此外，重復離心操作還有可能對囊泡造成損害，從而降低其質量。2.密度梯度離心。在超速離心力作用下，使蔗糖溶液形成從低到高連續分布的密度階層，是一種區帶分離法。通過密度梯度離心，樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集。此法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣，耗時，對離心時間極為敏感。南京外泌體提取試劑廠家人尿液來源細胞的外泌體的獲取方法，是首先分離培養人尿液來源細胞并收集培養基。

外泌體的提取方法學規范、統一定量及鑒定等。關于外泌體的提取有超速離心、試劑盒、超濾法、蔗糖密度梯度離心等，然而各種方法均有其利弊。超速離心法是目前外泌體相關文章中的主流方法，由于離心步驟繁瑣，費事費力，而且步驟多導致實驗中容易污染，且損耗量大，使得較終回收的外泌體不穩定。而且對于抽提細胞上清來說，更是極為不請便，試想用提取300ml的上清需要6個50ml離心管，無論是過濾還是后續的每一步的離心去沉淀，都具有操作極其不便的缺點，總之非常麻煩。而超濾法存在外泌體會堵塞膜孔，造成濃縮效率低，濃縮管重復利用差，甚至堵塞在膜孔的外泌體還可能會粘連成團，造成損失及較后的數據有誤差，對于后續實驗也有影響

用于外泌體提取的體液收集注意事項：1、選擇血清還是血漿？推薦大多數研究選擇血漿。血液凝固過程中血小板會產生大量外泌體，含量占血清中外泌體的50%以上，選擇血漿可避免不必要的影響。2、注意抗凝劑的選擇。肝素類抗凝劑與PCR假陰性有關，這可能是因為肝素與引物和/或酶有競爭作用。除了克制PCR，肝素可以與外泌體結合，阻止細胞攝取外泌體。因此需要記錄肝素類藥物的患者的血液樣本。EDTA和雙嘧達莫（CTAD），CTAD可以阻止血小板的并克制其釋放外泌體。EDTA可能會干擾PCR反應（盡管其程度小于肝素），但是還是優于其他選擇。此外，有研究表明鈣螯合劑可在體外促進外泌體與血小板的結合從而降低經EDTA、或檸檬酸鹽處理后的血液樣本中外泌體的表觀數量。外泌體表面有其特異性標記物，用包被抗標記物抗體的磁珠與外泌體囊泡孵育后結合。

有的外泌體分離方法需要高速離心，需要使用大型機器，耗費近24小時的時間才能獲得，非常不便。而高離心力也可能破壞囊泡。降低樣品的質量。這項研究有望解決這一難題。在論文中，研究人員們提供了一種通過微流體和聲學的獨特組合從體液樣品中捕獲外泌體的新穎方法。他們開發的原始聲學分選裝置由兩個傾斜的聲學換能器和一個微流體通道組成，當這些傳感器產生的聲波相互碰撞時，形成產生一系列壓力節點的駐波。每當細胞或顆粒流過通道并遇到一個節點時，壓力會將細胞引導離開中心一點點。細胞移動的距離取決于大小和其他屬性（如可壓縮性），這樣，當到達通道末尾時，不同大小和性質的細胞就能夠被分離開來。這種方法分離得到的外泌體，基本上不改變其生物或物理特征，為開發評估人類健康以及疾病診斷和進展提供了有吸引力的新方法。通過離心篩選初步去除體液中的細胞成分和細胞碎片，制成體液樣本備用。深圳外泌體提取試劑推薦廠家

在體內參與細胞通訊、細胞遷移、促血管新生和抗一些病癥免疫等生理過程，與多種疾病的發生和進程密切相關。正規外泌體提取試劑

外泌體是指包含了復雜RNA和蛋白質的小膜泡(30-150nm)，現今，其特指直徑在40-100nm的盤狀囊泡。1983年，外泌體初次于綿羊網織紅細胞中被發現，1987年Johnstone將其命名為“exosome”。多種細胞在正常及病理狀態下均可分泌外泌體。其主要來源于細胞內溶酶體微粒內陷形成的多囊泡體，經多囊泡體外膜與細胞膜融合后釋放到胞外基質中。所有培養的細胞類型均可分泌外泌體，且外泌體天然存在于體液中，包括血液、唾液、尿液、腦脊液和乳汁中。有關他們分泌和攝取及其組成、“運載物”和相應功能的精確分子機制剛剛開始研究。外泌體目前被視為特異性分泌的膜泡，參與細胞間通訊，對外泌體的研究興趣日益增長，無論是研究其功能還是了解如何將其用于微創診斷的開發。正規外泌體提取試劑