這兩種層析都基于蛋白質(zhì)的疏水性質(zhì)，但應(yīng)用條件和劇烈程度不同。HIC在生理?xiàng)l件或高鹽濃度下進(jìn)行，高鹽濃度增強(qiáng)了蛋白質(zhì)表面的疏水相互作用，使其與固定相上溫和的疏水基團(tuán)（如苯基、丁基）結(jié)合。隨后通過降低鹽濃度的梯度進(jìn)行洗脫。HIC非常適用于在離子交換后緊接著進(jìn)行，因?yàn)榍耙徊降母啕}樣品可以直接上樣。它能有效地分離由于構(gòu)象差異或疏水貼片不同而表現(xiàn)各異的蛋白質(zhì)。相比之下，反相層析（RPC）的固定相是密度極高的疏水基團(tuán)（如C4, C8, C18），流動(dòng)相是水與有機(jī)溶劑（如乙腈、甲醇）的混合物。蛋白質(zhì)在RPC中經(jīng)歷劇烈的變性條件，通過增加有機(jī)溶劑的比例被洗脫。RPC分辨率極高，主要用于肽段分析和質(zhì)譜前處理，或?qū)τ袡C(jī)溶劑穩(wěn)定的蛋白質(zhì)的然后精純，但可能導(dǎo)致活性蛋白的變性。生物制藥領(lǐng)域?qū)Φ鞍追蛛x純化技術(shù)提出了更高的要求。重慶抗體蛋白分離純化技術(shù)

尺寸排阻層析，也稱為凝膠過濾，是根據(jù)蛋白質(zhì)流體力學(xué)體積（或表觀分子量）進(jìn)行分離的獨(dú)特方法。其固定相是由高度多孔的惰性顆粒組成。當(dāng)?shù)鞍踪|(zhì)混合物通過層析柱時(shí)，大于孔徑的蛋白質(zhì)無法進(jìn)入顆粒內(nèi)部，只能從顆粒間的空隙流過，因而較早被洗脫。較小的蛋白質(zhì)可以進(jìn)入部分或全部孔徑，在柱內(nèi)停留的路徑更長，因而被較晚洗脫。SEC的流動(dòng)相只用于輸送蛋白質(zhì)，不參與分離過程，因此通常采用等ocratic洗脫（恒定緩沖液成分）。SEC主要用于三個(gè)目的：1）脫鹽或更換緩沖液；2）估算蛋白質(zhì)的表觀分子量；3）作為精純步驟，分離蛋白質(zhì)的單體與聚合體，或分析蛋白質(zhì)的寡聚狀態(tài)。其優(yōu)點(diǎn)是條件溫和，能保持蛋白質(zhì)活性，但分辨率相對較低，且上樣量小。福建重組蛋白分離純化基礎(chǔ)概念不同類型的蛋白質(zhì)需要設(shè)計(jì)個(gè)性化的分離純化方案。

對于分析和制備型層析，自行裝填層析柱能提供更大的靈活性并降低成本。均勻、無氣泡的柱床是獲得高分辨率的關(guān)鍵。裝柱后，需用標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)（如鹽溶液）測定柱效，即理論塔板數(shù)，并計(jì)算不對稱因子。一個(gè)性能良好的色譜柱應(yīng)具有高柱效和對稱的峰形，這表明裝填均勻，能實(shí)現(xiàn)高效的分離。將實(shí)驗(yàn)室優(yōu)化的純化方案成功放大到生產(chǎn)規(guī)模，需要系統(tǒng)的工程學(xué)考量。主要是保持層析分離的關(guān)鍵參數(shù)不變，如線性流速、柱床高度、樣品載量及緩沖液組成。同時(shí)，需考慮設(shè)備差異、循環(huán)時(shí)間延長、流體壓力分布及成本控制等因素。成功的工藝放大是生物技術(shù)產(chǎn)品從實(shí)驗(yàn)室走向市場的必經(jīng)之路。

FPLC和HPLC都是采用泵系統(tǒng)來精確控制流動(dòng)相輸送的層析技術(shù)，區(qū)別于依靠重力流動(dòng)的傳統(tǒng)柱層析。FPLC系統(tǒng)專為生物大分子（如蛋白質(zhì)、核酸）設(shè)計(jì)，使用生物相容性的材料（如PEEK）流路，以中低壓（通常<5 MPa）運(yùn)行，采用溫和的瓊脂糖或聚合物基質(zhì)樹脂，旨在保持蛋白質(zhì)的活性。它非常適合用于IEX， SEC， HIC和親和層析的精確分析和制備。HPLC則通常在更高的壓力下運(yùn)行（10-40 MPa），使用剛性更強(qiáng)的硅膠基質(zhì)小顆粒填料，提供極高的分辨率。反相層析（RPC）和離子交換層析（IEX）的HPLC形式常用于分析和小量制備，但HPLC的激烈條件可能使某些蛋白質(zhì)變性。選擇FPLC還是HPLC取決于對分辨率、速度和蛋白質(zhì)活性保持的綜合需求。高度純化的蛋白質(zhì)可用于研究其分子機(jī)制和生物功能。

在重組蛋白的生產(chǎn)中，宿主細(xì)胞蛋白（HCP）和DNA是兩類主要的工藝相關(guān)雜質(zhì)。HCP是宿主細(xì)胞自身表達(dá)的蛋白質(zhì)混合物，其復(fù)雜性高，有些與目標(biāo)蛋白性質(zhì)相似，去除挑戰(zhàn)大。殘留的HCP可能具有免疫原性或酶活性，影響產(chǎn)品的安全性和有效性。DNA同樣需要被去除至極低水平。陰離子交換層析是去除DNA和酸性HCP的有效手段（因其帶強(qiáng)負(fù)電）。此外，疏水層析、混合模式層析以及特定的過濾膜也能輔助去除HCP。工藝驗(yàn)證中，需要使用ELISA等靈敏的方法來定量檢測產(chǎn)品中HCP和DNA的殘留量，確保符合法規(guī)要求。蛋白分離純化對于研究抗體藥物有著重要意義。東西湖區(qū)抗體純化

穩(wěn)定的實(shí)驗(yàn)操作有助于減少蛋白分離純化中的誤差。重慶抗體蛋白分離純化技術(shù)

固定化金屬離子親和層析是重組蛋白純化中較廣泛應(yīng)用的技術(shù)之一。其原理是將螯合劑固定于介質(zhì)上，螯合鎳離子、鈷離子等過渡金屬離子，這些金屬離子又能與重組蛋白末端融合的寡聚組氨酸標(biāo)簽（如6xHis標(biāo)簽）特異性結(jié)合。結(jié)合后，通過提高咪唑濃度（咪唑競爭性結(jié)合金屬離子位點(diǎn)）或降低pH進(jìn)行洗脫。IMAC具有結(jié)合容量高、通用性強(qiáng)、條件溫和易于保持蛋白活性等優(yōu)點(diǎn)，使其成為重組蛋白表達(dá)和純化標(biāo)準(zhǔn)化流程的關(guān)鍵。離子交換層析依據(jù)蛋白質(zhì)表面凈電荷的差異進(jìn)行分離。介質(zhì)表面帶有固定的離子基團(tuán)（如陰離子交換劑的季銨基，陽離子交換劑的磺酸基），與帶相反電荷的蛋白質(zhì)分子發(fā)生靜電吸附。通過逐步增加緩沖液離子強(qiáng)度，帶電較弱的蛋白質(zhì)先被洗脫，帶電強(qiáng)的后洗脫。該方法分辨率高、載量大、成本相對較低，常作為親和層析后的中間純化步驟，有效去除電荷性質(zhì)不同的宿主細(xì)胞蛋白、核酸及聚集體等雜質(zhì)。重慶抗體蛋白分離純化技術(shù)

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