一、原理在體外培養皿或平板培養的單層貼壁細胞上，用微量頭或其它硬物在細胞生長的區域劃線，去除部分的細胞，然后繼續培養細胞至實驗設定的時間，取出細胞培養板，在顯微鏡下觀察并拍照記錄特定位置細胞的生長遷移能力。通過不同分組之間的細胞對于劃痕區修復能力的不同，可以判斷各組細胞的遷移與修復能力的差別。二、步驟1、準備：所有能滅菌的器械都要滅菌，直尺和marker筆在操作前紫外照射30min（超凈臺內）2、流程：1.培養板劃線：先用marker筆在6孔板背后，用直尺比著，均勻得劃橫線，大約每隔cm一道，橫穿過孔，每孔至少穿過5條線；2.鋪細胞：在孔中加入約5×105個細胞，具體數量因細胞不同而不同，掌握為過夜能鋪滿；3.細胞劃線：第二天用頭比著直尺，盡量垂至于背后的橫線劃痕，頭要垂直，不能傾斜；4.洗細胞：用PBS洗細胞3次，去除劃下的細胞，加入無血清培養基；5.細胞培養及觀察：放入37℃、5%CO2培養箱，培養；按0，6，12，24小時取樣，倒置顯微鏡觀察特定位置細胞遷移情況并拍照；6.結果分析：使用ImageJ軟件打開圖片后，隨機劃取6-8條水平線，計算細胞間距離的均值。三、注意事項1、鋪細胞使用6孔板，因為6孔板可以保證有相當距離的平直劃痕。SD大鼠心外膜細胞取自新鮮的組織材料，并且按照標準操作流程進行原代細胞的分離和培養。天津Balbc裸鼠原代細胞分離培養

1、取新鮮抗凝全血（EDTA、枸櫞酸鈉或肝素抗凝血均可）或者去纖維蛋白血液，用等體積的全血及組織稀釋液或者PBS稀釋全血。2、取一支無菌離心管，先加入試劑A，再加入試劑D，使兩者形成梯度界面（試劑A：試劑D的體積比為3：2，如稀釋后的血液樣本小于5ml，則先后加入3ml試劑A和2ml試劑D；如稀釋后的血液樣本大于5ml，試劑總量與稀釋后的血液樣本量相等），兩種試劑的分層一定要清晰。3、將稀釋后的血液平鋪到分離液液面上方，注意保持兩液面界面清晰。（可以使用巴氏德吸管吸取血液，然后將血液小心的平鋪于分離液上，因為兩者的密度差異，將形成明顯的分層界面。如果樣品較多，加樣的時間較長，在離心之前出現紅細胞成團下沉屬正?，F象）4、室溫，水平轉子500~800g，離心20~30min（血液的體積越大所需的離心力越大，離心時間越長，的分離條件需自行摸索，離心轉速不超過1000g）。5、離心后將出現明顯的分層：層為血漿層；第二層為白色單核細胞層；第三層為透明試劑D液層；第四層為半透明試劑A液層；第五層為紅細胞層（如圖示）。6、小心吸取第二層白色單核細胞層到另一無菌的15ml離心管中，加入10mL細胞洗滌液或PBS，顛倒混勻，250g，離心10min。7、棄上清。浙江綜合原代細胞分離培養優勢SD大鼠腎足細胞原代細胞分離技術。

把培養瓶置于倒置顯微鏡下觀察，如大部分細胞變圓，立即移除胰酶消化液（如大部分細胞飄起，可不移除胰酶消化液），加入5ml預熱完全培養基，用吸管取培養液吹打瓶壁細胞，使其脫離瓶壁形成單細胞懸液，離心，小心移除上清；3、加入適量（消化前預估細胞的數量，1-2*10E6/ml凍存液）凍存液并吹打混勻，分裝至凍存管中，標記凍存細胞的名稱、冷凍日期、操作者姓名拼音簡寫，然后放入梯度降溫盒（提前復溫至室溫），置于-80℃過夜，次晨置于液氮罐中保存。注意事項1.密切觀察細胞的生長密度，當細胞密度即將達到其生長密度極限時進行換液，以便第二天進行保種；2.消化前進行凍存液配制，切勿用培養基和血清重懸細胞后再加入DMSO，這樣會導致局部高濃度的DMSO對細胞產生損傷；3.消化前預估細胞的數量，加入適量凍存液，以使細胞密度為1-2*10E6/ml，密度過高會導致凍存保護液不足，密度過低會導致凍存液對細胞有毒性；4.梯度降溫盒必須提前復溫至室溫，切勿從-80℃取出即可使用，這樣會導致細胞全部死亡；5.離心速度和時間依據具體細胞決定。環節問細胞體內外培養的差別是什么？答：細胞離體后，失去了神經體液的調節和細胞間的相互影響，生活在缺乏動態平衡相對穩定環境中。

上期我們主要講解了細胞凋亡的早期檢測方法，這期主要講解一下細胞凋亡晚期中，核酸內切酶（某些Caspase的底物）在核小體之間剪切核DNA，產生大量長度在180-200bp的DNA的片段。1、凋亡DNALadder檢測試劑盒細胞經處理后，采用常規方法分離提純DNA，進行瓊脂糖凝膠和溴化乙啶染色，在凋亡細胞群中可觀察到典型的DNAladder。QuickApoptoticDNALadderDetectionKit可以快速（約1-2小時）、靈敏地檢測凋亡細胞中的DNA的片段。2、TUNEL-basedDNA的片段分析試劑盒細胞凋亡中,染色體DNA雙鏈斷裂或單鏈斷裂而產生大量的粘性3-OH末端，可在脫氧核糖核苷酸末端轉移酶（TdT）的作用下，將脫氧核糖核苷酸和熒光素、過氧化物酶、堿性磷酸酶或生物素形成的衍生物標記到DNA的3-末端，從而可進行凋亡細胞的檢測。Apo-BrdUTM分析使用2種顏色的TUNEL方法用流式細胞儀檢測凋亡細胞中DNA條帶。采用的BrdU比生物素標記的或地高辛（digoxigenylated）標記的方法靈敏度更高。3、Caspase分析試劑和試劑盒Caspase在細胞凋亡中發揮著重要的作用，屬于天冬氨酸蛋白酶。其中caspase-3為關鍵的執行分子，它在凋亡信號傳導的許多途徑中發揮功能。在正常狀態下，caspase家族都以無活性的酶原。血管疾病發生一個主要因素是由于血管平滑肌細胞轉變成為了具有繁殖能力的表型。

細胞凋亡與細胞壞死不同，細胞凋亡不是一件被動的過程，而是主動過程，它涉及一系列基因的ji活、表達以及調控等的作用，它并不是bing理條件下，自體損傷的一種現象，而是為更好地適應生存環境而主動爭取的一種死亡過程。上海東寰為您分享細胞凋亡與細胞壞死的區別。細胞凋亡與程序性死亡其實從嚴格的詞學意義上來說，細胞程序性死亡（PCD）與細胞凋亡是有很大區別的。細胞程序性死亡的概念是1956年提出的，PCD是個功能性概念，描述在一個多細胞生物體中某些細胞死亡是個體發育中的一個預定的，并受到嚴格程序把控的正常組成部分。例如蝌蚪變成青蛙，其bian態過程中尾部的消失伴隨大量細胞死亡，高等哺乳類動物指間蹼的消失、顎融合、視網膜發育以及免yi系統的正常發育都必須有細胞死亡的參與。這些形的在機體發育過程中出現的細胞死亡有一個共同特征：即散在的、逐個地從正常組織中死亡和消失，機體無炎癥反應，而且對整個機體的發育是有利和必須的。因此認為動物發育過程中存在的細胞程序性死亡是一個發育學概念，而細胞凋亡則是一個形態學的概念，描述一件有著一整套形態學特征的與壞死完全不同的細胞死亡形式。但是一般認為凋亡和程序性死亡兩個概念可以交互使用。研究表明,成年哺乳動物心外膜細胞具有多向分化的潛能,可能是心臟駐留干細胞的來源。河北哪里原代細胞分離培養評價

枯否細胞和一般的巨噬細胞不同，枯否細胞不具有增加抗原免疫原性的能力，相反有消除或減弱抗原性的作用。天津Balbc裸鼠原代細胞分離培養

實驗介紹細胞遷移與侵襲實驗將Transwel小室放入培養板中，小室內稱上室，培養板內稱下室，上下層培養液以聚磚酸甜膜相隔，將研究的細胞種在上室內，由于聚碳酸脂膜有通透性，下層培養液中的成分可以影響到上室內的細跑，應用不同孔徑和經過不同處理的聚碳酸脂膜，就可以進行共培養、細胞趨化、細胞遷移、細胞侵襲等多種方面的研究。一、實驗步驟：材料準備可拍照顯微鏡，Transwel小室，孔徑8um，沒包被膠的(Coste和Corning公司的也較常用)，Transwel遷移實驗的細胞培養板24孔板。細胞培養板應當與購買的Transwel小室相配套，BD公司的Matiael，無血清DMEM，(1%胎生血清)DMEM和1640培養基，DMEM完全培養基，1640完全培養基(也可加到20%血清)，無菌PBS，棉簽，胰酶，甲醇，結晶紫染液((g/ml)PBS結晶案)。二、步驟和流程用BD公司的Matrioel1:8(根據細胞產生mmp的量來決定)釋，包被Transwel小室底部膜的上室面，置37C30min使Mtrigel聚合成凝膠。使用前進行基底膜水化。1、制備細胞懸液前可先讓細胞撤血清饑餓12-24h，進一步去除血清的影響，但這一步并不是必須的。2、消化細胞，終止消化后離心棄去培養液，(用PBS洗1-2遍)，用含BSA的無血清培養基重縣，調整細胞密度至5x105/ml。天津Balbc裸鼠原代細胞分離培養